终得到浓度为 100 mg·mL-1 的 SBP 药液（SBP-SGF）。
2.2.2 细胞培养及给药方式
PC12 细 胞（CRL-1721） 购 自 American Type Culture Collection（ATCC，Manassas，VA）。PC12 细胞置于 DMEM 培养液（含 6% 胎牛血清和马血清、100 U·mL-1 青霉素及 100 μg·mL-1 链霉素），在 37 ℃、7.5%CO2 及饱和湿度条件下的细胞培养箱中培养。细胞给药时，PC12 细胞置于低血清 DMEM 培养液（含 1% 胎牛血清和马血清、100 U·mL-1 青霉素及 100 U·mL-1 链霉素）中 3 小时，再置于含有各药液的低血清 DMEM 培养液中 48 小时。
RAW264.7 细 胞（TIB-71） 购 自 American Type Culture Collection（ATCC，Manassas，VA）。细胞置于 DMEM 培养基（含 10% 胎牛血清、100 U·mL-1 青霉素和 100 μg·mL-1 链霉素）中，在 37 ℃、5% CO2 及饱和湿度条件下的细胞培养箱中培养，隔天传代。细胞给药时，先用含不同前处理的 SBP 的完全培养基孵育 5 小时，后加入脂多糖（Lipopolysaccharides，LPS，100 ng·mL-1）诱导炎症反应，继续培养 12 小时后收集细胞。
本研究中 DMSO 和 SGF 处理细胞时的体积比均控制在 0.1% 以内。
2.2.3 MTT 法测细胞毒性
利用 MTT 法进行细胞活力测定以确定每种药液的安全给药浓度范围，确保在该安全浓度范围内所有药液均不诱导细胞增殖或死亡。将 PC12 细胞接种到96 孔板，将 SBP 按照一定的浓度梯度处理细胞，48 小时后加入 5 mg·mL-1 的MTT，培养箱中孵育 3 小时，吸走含 MTT 的培养基，加入 DMSO，震荡 15 分钟后于 570 nm 中测量其吸光度值。
2.2.4 PC12 细胞轴突生长的形态学观察
PC12 细胞以 3×104/mL 接种于 6 孔板中，以培养基为空白对照，NGF（50 ng·mL-1）为阳性对照；以含有或不含低浓度 NGF（1.5 ng·mL-1）的每种药液处理 PC12 细胞 48 小时，每 24 小时供应新鲜培养基和药液。光镜下各组随机选择 10 个视野，利用 SPOT 软件显微镜测微尺测量各组分化细胞的细胞轴突长度。若一个或多个神经轴突长于细胞直径，则该细胞被归为分化细胞，根据其神经轴突长度分为不同组，即 < 15 μm 组、15-30 μm 组及 > 30 μm 组。
